Calitatea eșantionului de la testele de ace EBUS-TBNA și de patologie moleculară

Noi cerințe privind selecția acelor pentru testele de miezuri de țesut, blocuri celulare, NGS și PD-L1

https://profed.olympuschina.com/gs/thoracicsurgery/12628/

În era oncologiei de precizie,EBUS-TBNAtrebuie să răspundă nu doar „Este cancer?” dar oferă și: subtipări histologice (adenocarcinom/carcinom cu celule scuamoase/celule mari/NSCLC-NOS), Ki-67, colorație TTF{-1/p40, expresie PD{{-L1 (clonele 22C3/SP142, etc.), și profilarea mutației AFROS, ALK, FREG1, etc. MET, RET, KRAS și panouri NGS largi). Acest lucru necesită randamente de ADN de obicei cuprinse între 10 și 250 ng per procedură (dependent de platformă), păstrând în același timp arhitectura țesuturilor pentru capacitățile IHC care le depășesc pe cele ale frotiurilor citologice FNA tradiționale. În consecință, designul acului EBUS evoluează spre „achiziția de țesut” (FNB/randament de bază).

Tipuri de mostre și relații între ac:

• FNA (aspirație cu ac fin):​ Ace de 21G/22G cu un singur teșit{-taiat în spate-+ aspirație cu presiune negativă → grupuri de celule + fragmente stromale → frotiuri (Dif-Quik/H&E) + bloc de celule. Blocurile celulare permit IHC și unele teste moleculare, dar volumul limitat de țesut poate împiedica adecvarea ADN-ului pentru întregul-exomul sau panourile NGS mari.
• FNB (biopsie cu ac fin):​ Ace Franseen cu trei-margini, tăiere-coroană sau invers-ProCore → benzi de țesut/micro-miezuri → secțiuni fixe, încorporate. Păstrează arhitectura țesutului, permițând o calitate superioară a IHC și randamente mai mari de ADN/ARN în comparație cu blocurile de celule FNA echivalente.
• Ace cu-lumen mari de 19G:Diametrul intern mai mare aspiră miezuri de țesut mici sau volume mai mari de probe, potrivite pentru testarea multiplex, deși este necesară vigilență împotriva contaminării sângelui care afectează calitatea probei.
• Integrare ROSE (Evaluare rapidă la-site):​-Citopatologii/tehnicienii de la fața locului evaluează în mod preliminar frotiul, evaluând „celularitatea adecvată”, necroza, granuloamele sau țesutul limfoid, ghidând deciziile de a opri prelevarea de probe sau de a schimba stațiile. ROSE reduce trecerile medii de ac (adesea 3-4 față de. 6-7 fără ROSE) și îmbunătățește ratele de adecvare a probelor. Unele centre folosesc microscopia cu contrast de fază pentru triajul blocurilor celulare.

Implicații pentru selecția acului determinată de testarea moleculară:​ Pentru pacienții cu NSCLC care fac obiectul unei evaluări direcționate și prin imunoterapie, se recomandă acordarea de prioritate acelor 19G FNB sau 21G Franseen FNB, acolo unde sunt disponibile, asigurând prelevarea de la cel puțin 2-3 stații pentru a genera atât blocuri celulare, cât și miezuri de țesut. Numai screeningul citologic poate utiliza ace 22G FNA, dar necesită un număr crescut de treceri și pregătirea blocului celular. Studiile sugerează că ratele de succes ale NGS au tendința de a crește cu probele obținute prin ace 19G, comparativ cu 22G FNA, în special pentru tumorile bogate în stromă sau paucicelulare.

Exemple de recomandări de manipulare (deseori detaliate în Instrucțiuni de utilizare - IFU):​ Spălați imediat lumina post-puncție a acului cu tampon BSA/PBS într-un tub de colectare → procesați până la blocarea celulelor (fixare cu formol → încorporare de parafină) sau fixați miezurile de țesut direct în formol. Preveniți uscarea lumenului pentru a evita degenerarea celulară. Gestionați înfundarea avansând ușor stilul sau aplicând rafale scurte de aer-subliniind scopul funcțional al stiltului (prevenirea înfundarii + păstrarea integrității probei).

În concluzie, selecția acului EBUS-TBNA trece de la „pur și simplu penetrant” la „personalizarea tipului de ac și a fluxului de lucru procedural bazat pe cerințele patologiei moleculare”. Această evoluție reprezintă un punct focal al colaborării multidisciplinare între medici oncologi, patologi și pneumologi intervenționali.